Malign transformation uppstår när celler frikopplar proliferation från mitogena signaler och samtidigt förlorar kontrollpunkter som normalt stoppar DNA-replikation eller mitos vid genomskada. Följden blir replikationsstress, genominstabilitet och klonal selektion av celler som undviker senescens, apoptos och behandlingsinducerad celldöd.
Cellcykelns faser och övergripande kontrollprinciper
Cellcykeln omfattar vilofasen G0 och de proliferativa faserna G1, S, G2 och M. I G1 byggs cellmassa upp och cellen integrerar mitogena signaler, näringstillgång och stress. Under S-fas dupliceras DNA, varefter G2 används för kontroll av fullbordad replikation och förberedelse inför mitos. M-fasen omfattar kromosomkondensation, kärnmembransupplösning, spolbildning, systerkromatidseparation och cytokines.
| Fas | Huvudsaklig funktion | Central reglering |
|---|---|---|
| G0 | Reversibel quiescens eller långvarigt postmitotiskt tillstånd | Låg cyklin–CDK-aktivitet, aktivt RB |
| G1 | Tillväxt och beslut om fortsatt proliferation | Cyklin D–CDK4/6, cyklin E–CDK2, RB–E2F |
| S | DNA-replikation och centrosomduplicering | Cyklin A–CDK2, ATR–CHK1 |
| G2 | Kontroll av replikation och DNA-integritet | Cyklin A/B–CDK1, Wee1, Cdc25 |
| M | Segregation av kromosomer och cytokines | Cyklin B–CDK1, spolkontrollen, APC/C |
Cykeltiden varierar kraftigt mellan celltyper. Snabbt prolifererande humana celler kan genomföra en cykel på ungefär 10–30 timmar, medan celler kan stanna i G0 under månader eller år. Terminalt differentierade neuron och kardiomyocyter har mycket begränsad förmåga att återinträda i cellcykeln, medan hematopoetiska progenitorer och kryptceller i tarmen normalt omsätts snabbt.
Proliferationshastighet ska skiljas från tillväxtfraktion. Tillväxtfraktionen är andelen celler som befinner sig i aktiv cellcykel, medan proliferationshastigheten även beror på cykeltid, celldöd och andelen misslyckade delningar. En tumör kan därför ha hög Ki-67-fraktion men måttlig nettotillväxt på grund av omfattande apoptos, eller låg momentan proliferationsfraktion men ändå återkomma genom en långlivad, långsamt cyklande cellpopulation.
Fasövergångarna styrs av cykliner, cyklinberoende kinaser, CDK-hämmare och riktad proteolys. Fosforylering kan snabbt ändra proteiners aktivitet, medan ubiquitinmedierad nedbrytning av regulatorer gör flera övergångar funktionellt irreversibla. När exempelvis securin och cyklin B har brutits ned kan cellen inte återgå från anafas till metafas utan måste fullfölja mitotiskt utträde.
Cyklin–CDK-systemet och proteolytiska oscillatorer
Tidigt i G1 inducerar tillväxtsignaler cyklin D, som binder CDK4 eller CDK6. Komplexen fosforylerar bland annat retinoblastomproteinet, RB, och underlättar uttryck av cyklin E. Cyklin E–CDK2 förstärker sedan RB-fosforyleringen och initierar G1/S-övergången. Under S-fas ersätts cyklin E huvudsakligen av cyklin A, som tillsammans med CDK2 driver replikation och hindrar att redan aktiverade replikationsursprung licensieras på nytt.
Inför mitos ansamlas cyklin B och bildar komplex med CDK1. CDK1 måste fosforyleras på en aktiverande position av CDK-activating kinase, CAK, men hålls samtidigt inaktivt genom inhibitorisk fosforylering utförd av Wee1. Fosfataset Cdc25 avlägsnar den inhibitoriska fosfatgruppen. Aktivt cyklin B–CDK1 aktiverar ytterligare Cdc25 och hämmar Wee1, vilket skapar en positiv återkopplingsslinga och ett abrupt, tröskelliknande inträde i mitos.
Två ubiquitinligassystem är särskilt viktiga:
- SCF-komplexet känner vanligen igen redan fosforylerade substrat och är aktivt under stora delar av cellcykeln. Det bidrar bland annat till nedbrytning av cyklin E och vissa CDK-hämmare.
- APC/C, anaphase-promoting complex/cyclosome, aktiveras med kofaktorn CDC20 i mitos och senare med CDH1. APC/C–CDC20 ubiquitinerar securin och cyklin B.
- Nedbrytning av securin frigör separas, som klyver cohesin och tillåter systerkromatiderna att separera.
- Nedbrytning av cyklin B sänker CDK1-aktiviteten och möjliggör dekondensation av kromosomer, återbildning av kärnmembran och mitotiskt utträde.
Systemet fungerar som en proteolytisk oscillator: cykliner syntetiseras, aktiverar CDK och förstörs därefter vid bestämda tidpunkter. Stabiliserat cyklin E kan ge för tidig eller förlängd S-fas, medan bristande APC/C-reglering kan medföra prematur anafas eller misslyckat mitotiskt utträde. Båda situationerna ökar risken för replikationsfel, kromosomsegregationsfel och aneuploidi.
G1-restriktionspunkten: RB–E2F-axeln
G1-restriktionspunkten är den fas där cellen förbinder sig att fullfölja en ny cykel. Mitogener aktiverar receptor-tyrosinkinaser och nedströms signalering genom RAS–RAF–MEK–ERK samt PI3K–AKT–mTOR. ERK stimulerar transkription av bland annat CCND1, medan AKT och mTOR främjar proteinsyntes, metabolism och stabilisering av cyklin D. Avsaknad av tillväxtsignaler leder normalt till låga cyklin D-nivåer och kvarstående RB-medierad broms.
Hypofosforylerat RB binder E2F-transkriptionsfaktorer och rekryterar kromatinrepressiva komplex. Cyklin D–CDK4/6 initierar RB-fosforylering; cyklin E–CDK2 förstärker därefter processen. Frigjort E2F inducerar gener för nukleotidsyntes, DNA-polymeraser, MCM-proteiner, cyklin E och cyklin A. E2F skapar därmed positiv återkoppling som gör övergången till S-fas svår att reversera.
| Regulator | Normal funktion | Cancerrelevant förändring |
|---|---|---|
| p16^INK4A | Hämmar CDK4/6 | Deletion eller metylering av CDKN2A |
| p21^CIP1 | Hämmar främst CDK2; p53-målgen | Förlorad p53-signalering |
| p27^KIP1 | Begränsar cyklin E/A–CDK2 | Minskad mängd eller ökad nedbrytning |
| RB | Reprimerar E2F | Biallelisk RB1-förlust |
| Cyklin D1 | Aktiverar CDK4/6 | CCND1-amplifiering eller translokation |
| CDK4 | Fosforylerar RB | Amplifiering eller aktiverande förändring |
RB1-förlust gör E2F-aktiviteten oberoende av RB-fosforylering. CDKN2A-deletion, CCND1-amplifiering och CDK4-amplifiering uppnår en liknande funktionell effekt genom överaktivt CDK4/6. Cellen kan då passera restriktionspunkten trots otillräckliga extracellulära tillväxtsignaler, kontaktinhibition eller differentieringssignaler. En klinisk konsekvens är att CDK4/6-hämmare förutsätter ett åtminstone delvis fungerande RB; vid RB1-förlust saknas det centrala substrat genom vilket läkemedlen stoppar G1/S-övergången.
DNA-skadekontroller och p53-svaret
Dubbelsträngsbrott aktiverar främst kinaset ATM, medan ATR reagerar på enkelsträngat DNA som täcks av replikationsprotein A, exempelvis vid stannade replikationsgafflar. ATM signalerar bland annat genom CHK2 och ATR genom CHK1, även om överlappning förekommer. CHK1 och CHK2 hämmar Cdc25-fosfataser och bromsar därigenom CDK2 eller CDK1. Resultatet blir stopp före eller under S-fas respektive vid G2/M-gränsen.
p53 hålls normalt på låg nivå genom ubiquitinligaset MDM2, som binder p53 och främjar dess proteasomala nedbrytning. DNA-skadesignalering modifierar p53 och MDM2, vilket minskar deras interaktion och stabiliserar p53. Som transkriptionsfaktor inducerar p53 bland annat CDKN1A, som kodar för p21. p21 hämmar cyklin E/A–CDK2, varpå RB förblir aktivt och E2F-medierad transkription dämpas.
Utfallet beror på skadans omfattning, celltyp och signalernas varaktighet. Ett övergående stopp ger tid för basexcision, nukleotidexcision, homolog rekombination eller annan DNA-reparation. Ihållande signalering kan etablera senescens, medan svår skada kan utlösa apoptos genom PUMA, NOXA och BAX. p53 inducerar även MDM2, vilket skapar negativ återkoppling och möjliggör pulserande p53-aktivitet.
Vid inaktiverande TP53-mutation fortsätter celler lättare att replikera trots skadat DNA. Missensevarianter kan dessutom ge stabilt, ackumulerat p53-protein med dominant-negativ effekt över kvarvarande vildtypsprotein. MDM2-amplifiering ger en annan mekanism: p53-genen kan vara intakt men proteinet hålls funktionellt nedtryckt. Dessa förändringar ökar toleransen för kromosombrott och underlättar fortsatt klonal evolution.
S-fas, replikationslicensiering och replikationsstress
Varje del av genomet ska normalt kopieras en gång per cellcykel. I sen mitos och G1 binder origin recognition complex, ORC, till potentiella replikationsursprung. ORC rekryterar CDC6 och CDT1, vilka laddar det helikasbildande MCM2–7-komplexet på DNA. Detta prereplikativa komplex innebär att ett ursprung är licensierat men ännu inte aktiverat.
Vid S-fasstart aktiverar CDK och andra kinaser en del av de licensierade ursprungen. MCM-helikaset öppnar DNA-dubbelspiralen, varefter polymeraser och hjälpproteiner bildar replikationsgafflar. Hög CDK-aktivitet förhindrar ny licensiering under S och G2, samtidigt som geminin binder och hämmar CDT1. Först när CDK-aktiviteten faller efter mitos och geminin bryts ned kan licensiering ske på nytt.
Onkogenaktivering stör denna ordning. MYC ökar transkription, metabolism och originaktivering; RAS driver tillväxtsignaler; och cyklin E–CDK2 kan tvinga fram en för tidig S-fas innan tillräckligt många ursprung har licensierats. Följden kan bli brist på vilande reservursprung, uttömning av nukleotider och kollisioner mellan replikations- och transkriptionsmaskineriet. Replikationsgafflar stannar, kollapsar eller omvandlas till dubbelsträngsbrott.
ATR–CHK1 stabiliserar stannade gafflar, hämmar nya origin och fördröjer cellcykeln. Många tumörer med hög replikationsstress är därför särskilt beroende av denna axel. ATR- eller CHK1-hämning kan avlägsna en nödvändig överlevnadsmekanism, men normal snabbt prolifererande vävnad kan också påverkas. Benmärg och gastrointestinalt epitel är därför relevanta riskorgan vid sådan behandling.
G2/M-kontrollen och inträdet i mitos
Under G2 ansamlas cyklin B–CDK1 i ett inaktivt tillstånd. CAK har tillfört en aktiverande fosfatgrupp, men Wee1 håller komplexet avstängt genom inhibitorisk fosforylering. När DNA-replikationen är fullbordad aktiveras Cdc25, som tar bort den hämmande fosfatgruppen. Den efterföljande positiva återkopplingen mellan CDK1, Cdc25 och Wee1 ger en snabb övergång till mitos.
Kvarstående DNA-skada eller enkelsträngat DNA aktiverar ATM/ATR och CHK1/CHK2. Dessa kinaser hämmar Cdc25 och kan samtidigt förstärka Wee1-beroende bromsning. p53 och p21 bidrar till ett mer långvarigt G2-stopp. Kontrollen är särskilt viktig i p53-defekta tumörer, eftersom G1-kontrollen redan är försvagad och cellerna blir mer beroende av S- och G2-kontrollerna.
Om checkpointen sviktar kan cellen gå in i mitos med oreplikerade segment eller kromosombrott. Det kan ge prematur kromosomkondensation, fragmentering och mitotisk katastrof. Vissa celler dör under eller efter mitosen, medan andra genomgår felaktig segregation och överlever som aneuploida kloner. Wee1-hämning utnyttjar denna sårbarhet genom att tvinga stressade tumörceller in i mitos, men effekten beror på tumörens replikationsstress och kvarvarande kontrollsystem.
Spolkontrollen, kromosomsegregation och cytokines
Under prometafas måste varje systerkinetokor fästa till mikrotubuli från motsatta spolpoler. MPS1, MAD1, MAD2, BUB1 och BUBR1 känner av obundna kinetokorer och otillräcklig dragspänning. De bidrar till bildning av mitotic checkpoint complex, MCC, som binder och hämmar CDC20. APC/C–CDC20 förblir därmed inaktivt så länge någon kromosom inte är korrekt bi-orienterad.
När samtliga kromosomer är korrekt fästa tystas kontrollen. APC/C–CDC20 bryter ned securin, separas aktiveras och cohesin mellan systerkromatiderna klyvs. Samtidig nedbrytning av cyklin B sänker CDK1-aktiviteten. Segregation följs av kontraktion av den aktomyosinbaserade delningsfåran och abskission mellan dottercellerna.
Försvagad spolkontroll kan tillåta anafas trots felaktiga fästen. Meroteliska fästen, där en kinetokor binder mikrotubuli från båda poler, kan undgå fullständig detektion och ge eftersläpande kromosomer. Centrosomamplifiering ökar risken för multipolära spolar; tumörceller kan samla extra centrosomer till två poler men får då fler felaktiga kinetokorfästen.
Cytokinesfel ger binukleära eller tetraploida celler med dubblerat centrosomantal. Eftersläpande kromosomer kan kapslas in i mikrokärnor, där DNA-replikationen är störd och kärnmembranet kan brista. Detta kan orsaka omfattande lokal kromosomfragmentering och felaktig återfogning, inklusive kromotripsisliknande mönster.
Onkogener och tumörsuppressorer som bryter cellcykelkontrollen
Onkogener aktiveras vanligen genom gain-of-function-förändringar: punktmutation, amplifiering, translokation eller autokrin signalering. En förändrad allel kan vara tillräcklig på cellnivå. Tumörsuppressorer förloras däremot ofta genom inaktivering av båda allelerna, exempelvis mutation följd av deletion eller förlust av heterozygositet.
| Gen eller väg | Förändring | Kontroll som kringgås |
|---|---|---|
| Receptor-tyrosinkinas, RAS, PI3K | Aktivering eller amplifiering | Mitogenberoende i G1 |
| MYC | Amplifiering eller överuttryck | Tillväxt, metabolism och S-fasinträde |
| CCND1, CDK4/6 | Amplifiering eller överaktivitet | RB–E2F-restriktionspunkten |
| RB1, CDKN2A | Biallelisk förlust | G1/S-broms |
| TP53 | Mutation eller deletion | Skadestopp, senescens och apoptos |
| PTEN | Förlust | PI3K–AKT-signalering |
| APC | Förlust | Wnt/β-kateninreglering |
| ATM | Förlust | Svar på dubbelsträngsbrott |
| BRCA1/2 | Biallelisk förlust | Homolog rekombination |
Tumörsuppressorförlust är inte alltid strikt recessiv. Vid haploinsufficiens räcker minskad gendos för att ge en biologisk effekt, även om den andra allelen finns kvar. Vissa p53-missenseproteiner bildar tetramerer med normalt p53 och verkar dominant-negativt. Därutöver kan muterat p53 i vissa sammanhang få nya egenskaper som främjar invasion, stressanpassning eller överlevnad.
Olika förändringar kan vara funktionellt redundanta. En tumör med RB1-förlust behöver inte vinna lika mycket på ytterligare CDK4-amplifiering, medan p53-förlust kan samverka starkt med MYC- eller RAS-aktivering genom att apoptosbarriären avlägsnas. Cancerutveckling speglar därför selektion av kombinationer som samtidigt driver proliferation, tolererar genomskada och säkrar överlevnad.
Från checkpointsvikt till malign fenotyp
Okontrollerad G1/S-övergång ökar replikationsbelastningen innan cellen har tillräckliga resurser. Stannade gafflar och dubbelsträngsbrott uppstår, samtidigt som defekta kontrollpunkter tillåter fortsatt cykling. Felreparation ger punktmutationer, deletioner, inversioner, translokationer och kopietalsförändringar. Segregationsfel skapar hela kromosomvinster och -förluster.
| Instabilitetstyp | Grundmekanism | Typiskt genomiskt resultat |
|---|---|---|
| Mikrosatellitinstabilitet, MSI | Defekt mismatch-reparation | Längdförändringar i repetitiva DNA-sekvenser |
| Homolog-rekombinationsdefekt, HRD | Exempelvis BRCA1/2-förlust | Deletioner, rearrangemang och karakteristiska genomiska ärr |
| Kromosomal instabilitet, CIN | Fortlöpande segregations- och reparationsfel | Aneuploiditet och varierande kopietal mellan celler |
Genominstabilitet skapar variation som klonal selektion kan verka på. Subkloner med förbättrad tillväxt, invasionsförmåga, immunundvikande eller läkemedelsresistens expanderar. Behandling förändrar selektionstrycket: en tidigare liten resistent subklon kan dominera efter att känsliga celler eliminerats.
Instabilitet är dock inte obegränsat gynnsam. En alltför hög mutations- eller segregationsfrekvens förstör essentiella gener, rubbar stökiometrin mellan proteinkomplex och minskar cellens fitness. Tumörer balanserar därför mellan tillräcklig variation för evolution och tillräcklig genomisk ordning för överlevnad. Behandlingar riktade mot ATR, CHK1, Wee1 eller spolkontrollen försöker pressa redan instabila celler över denna toleransgräns.
Apoptos, senescens, telomerer och kris
Vid svår DNA-skada inducerar p53 de proapoptotiska BH3-proteinerna PUMA och NOXA samt effektorn BAX. Dessa motverkar antiapoptotiska BCL-2-familjeproteiner och permeabiliserar mitokondriens yttermembran. Cytokrom c frisätts, apoptosomen bildas och kaspas-9 följt av exekveringskaspaser aktiveras. Förlust av p53 eller överuttryck av antiapoptotiska proteiner gör att skadade celler kan överleva.
Senescens är ett stabilt proliferationsstopp snarare än quiescens. p16–RB-axeln kan upprätthålla långvarig E2F-repression, medan p53–p21 bidrar efter DNA-skada eller onkogen stress. Senescenta celler är metaboliskt aktiva och kan utveckla en senescensassocierad sekretorisk fenotyp, SASP, med cytokiner, tillväxtfaktorer och matrixmodifierande enzymer. Detta kan rekrytera immunceller men också skapa inflammation och främja tillväxt eller invasion i närliggande premaligna celler.
Telomerer förkortas när normala somatiska celler delar sig, eftersom kromosomändar inte kan replikeras fullständigt. Kritiskt korta telomerer aktiverar DNA-skadesvar och replikativ senescens. Om p53- och RB-systemen saknas kan cellen fortsätta dela sig in i telomerkris. Oskyddade kromosomändar fusionerar, bryggor bildas i anafas och bryts ojämnt i återkommande breakage–fusion–bridge-cykler.
En klon som återaktiverar telomerasets katalytiska komponent TERT kan stabilisera telomererna och undkomma krisen. En mindre andel tumörer använder alternativ telomerförlängning, ALT, som bygger på rekombinationsmekanismer. Telomerunderhåll ger inte i sig snabb proliferation men är en förutsättning för obegränsad replikativ potential.
Tumörspecifika och ärftliga exempel
Retinoblastom illustrerar tvåträffshypotesen. Vid ärftlig sjukdom finns en konstitutionell inaktiverande RB1-variant, och en andra somatisk träff slår ut den kvarvarande allelen i en retinal prekursor. Detta ger ofta tidig, bilateral eller multifokal sjukdom. Vid sporadiskt retinoblastom måste båda träffarna uppstå i samma cell, varför sjukdomen oftare är unilateral.
| Tillstånd | Central förändring | Cellcykelkonsekvens |
|---|---|---|
| Li–Fraumenis syndrom | Konstitutionell TP53-variant | Försvagat skadestopp och apoptossvar |
| Familjärt melanom | CDKN2A-variant | Förlust av p16^INK4A och ibland påverkan på ARF |
| Ataxia telangiectasia | Biallelisk ATM-förlust | Defekt svar på dubbelsträngsbrott |
| HPV-associerad cancer | Virala E6- och E7-proteiner | Nedbrytning/inaktivering av p53 respektive RB |
| Mantelcellslymfom | t(11;14) med CCND1-överuttryck | Ökad cyklin D1–CDK4/6-aktivitet |
| Höggradig serös ovarialcancer | Nästan genomgående TP53-avvikelse | Uttalad tolerans för genomskada och kromosomal instabilitet |
Li–Fraumenis syndrom medför predisposition för flera tidigt debuterande maligniteter, eftersom en central stress- och apoptosbarriär är försvagad i alla celler. Vid ataxia telangiectasia ger ATM-bristen både cancerpredisposition och uttalad strålkänslighet, vilket är kliniskt relevant vid val av diagnostik och behandling. CDKN2A-varianter kan predisponera för melanom och i vissa familjer även pankreascancer.
Högrisk-HPV ger ett icke-genetiskt exempel på funktionell tumörsuppressorförlust. E6 främjar p53-nedbrytning, medan E7 binder RB-familjens proteiner och frigör E2F. p16 blir ofta kraftigt uppreglerat som återkopplingssvar på RB-inaktivering och används därför som surrogatmarkör i vissa HPV-associerade tumörer, men p16-positivitet är inte i alla anatomiska lokaler liktydig med HPV-driven cancer.
Cellcykeldynamik, tumörheterogenitet och cancerstamcellsliknande tillstånd
Permanent checkpointsvikt ska skiljas från reversibel quiescens. En tumörcell kan ha genetiskt defekta kontrollpunkter men ändå gå in i ett G0-liknande tillstånd vid hypoxi, näringsbrist eller behandling. När miljön förbättras kan cellen återinträda i cykeln. Cytostatika som främst skadar S-fas eller mitos eliminerar då ofta prolifererande celler effektivare än långsamt cyklande celler.
Cancerstamcellsliknande tillstånd definieras funktionellt genom långsiktig självförnyelse och förmåga att återbilda en heterogen tumörpopulation. Tillståndet kan vara hierarkiskt organiserat men också plastiskt: differentierade tumörceller kan under vissa betingelser återfå tumörinitierande egenskaper. Quiescens, effektiv DNA-reparation, läkemedelsefflux och antiapoptotisk signalering kan bidra till behandlingsresistens och återfall.
Markörer som CD44, CD133, ALDH-aktivitet eller CD34^+CD38^− i vissa leukemier kan berika för tumörinitierande celler men är inte universella. De visar inte i sig en checkpointdefekt och kan uttryckas av både tumörinitierande och icke-tumörinitierande celler. Funktionell validering kräver exempelvis begränsningsspädning, tumörbildning i relevant modell och seriell transplantation. Resultaten påverkas samtidigt av mottagardjurets immunstatus och mikromiljö, vilket begränsar direkt klinisk tolkning.
Diagnostik, prognostik och behandlingsprinciper
Proliferation och cellcykelstörning bedöms med flera kompletterande metoder. Ingen enskild markör visar hela systemets funktion.
| Metod | Vad som mäts | Viktiga felkällor |
|---|---|---|
| Ki-67-immunhistokemi | Celler i G1, S, G2 och M, men inte typisk G0 | Intratumoral heterogenitet, hot spots, preanalytik |
| Mitosantal | Morfologiskt synliga mitoser | Varierande synfältsarea och provtagning |
| Fosfohistone H3 | Mitotiskt kromatin | Fångar endast en kort del av cykeln |
| DNA-innehållsanalys | G0/G1-, S- och G2/M-fraktion samt aneuploidi | Debris, dubbelceller och blandning med normala celler |
| p53-immunhistokemi | Proteinackumulation eller komplett bortfall | Alla TP53-varianter ger inte abnorm färgning |
| RB- och p16-färgning | Proteinexpression i RB-axeln | Expression är inte alltid liktydig med funktion |
Ki-67 ska bedömas enligt tumörspecifika riktlinjer, eftersom gränsvärden och prognostisk betydelse varierar mellan diagnoser. Ett litet prov kan missa ett högproliferativt område. Diffus stark p53-färgning kan tala för stabiliserande missensevariant och komplett bortfall för trunkerande förändring, men ett vildtypsliknande mönster utesluter inte TP53-mutation. Molekylär analys och morfologiskt sammanhang kan därför behövas.
CDK4/6-hämmare motverkar RB-fosforylering och används framför allt vid hormonreceptorpositiv bröstcancer. Resistens kan uppstå genom RB1-förlust, cyklin E–CDK2-aktivering, förändrad signalering eller klonal selektion. Wee1-, ATR- och CHK1-hämmare försöker i stället utnyttja tumörers beroende av kvarvarande replikations- och G2-kontroller. MPS1-hämning försvagar spolkontrollen och kan öka kromosomsegregationsfelen till letal nivå, men denna princip är fortfarande mer experimentell.
PARP-hämmare utnyttjar syntetisk letalitet vid homolog-rekombinationsdefekt. PARP-hämning försvårar hantering av enkelsträngsskador och fångar PARP på DNA; under replikation kan lesionerna omvandlas till skador som kräver homolog rekombination. BRCA1/2-defekta celler är därför särskilt sårbara. Resistens kan uppkomma genom sekundära varianter som återställer BRCA-läsramen, återställd gaffelstabilisering, förändrat läkemedelsupptag eller expansion av en HR-kompetent subklon.
Den terapeutiska principen är således inte enbart att stoppa proliferation. Behandlingen kan också avlägsna en kompensatorisk checkpoint, överbelasta DNA-reparationen eller driva kromosomal instabilitet över cellens toleransgräns. Samtidigt bestäms det kliniska fönstret av motsvarande processer i benmärg, slemhinnor, hårfolliklar och andra proliferativa normalvävnader.